Реферат: Технология выращивания грибов

--PAGE_BREAK--

Инокулюмдереворазрушающих рекомендуется выделять следующим образом (Punaren, 1967).Во влажную камеру помещают тщательно отмытые, разрезанные плодовые тела или же кусочки древесины, пронизанные мицелием гриба. Чашку с инокулюмом помещают в термостат при температуре 20-25 градусов С; при температуре 26-28 градусов С и выше скорость выделения может замедляться. Желательно чтобы относительная влажность воздуха была не ниже 80%, для чего в термостат можно поставить сосуд с водой.

 Выделение культур обычно производят на плотную среду: суслоагар, солодовый агар, картофельно-глюкозный агар и т.д. Если выделение идет плохо или мицелий не переходит с инокулюма на поверхность среды, в состав последней следует добавить дрожжевой автолизат, отвары коры, хвои или листьев различных высших растений (обычно в количестве от 0.5 до 5%), экстраты из плодовых тел грибов. В чашках Петри вместе с колониями

базидиальных грибов могут расти колонии плесневых грибов, дрожжей, бактерий, что обычно легко заметить. В таких случаях предполагаемые колонии базидиомицетов нужно последовательно пересеять и избавиться от инфекций с помощью обычных методов микробиологической техники.

 Но следует иметь в виду, что разные штаммы одного и того же вида могут значительно отличаться по скорости роста и требованию к питательной среде. По разному происходит выделение из плодовых тел неодинакового возраста.[9]Остальные методы, т.е. из базидиоспор, субстратов, миноризных окончаний корней в наших исследованиях малоэффективны.Условия необходимые для роста грибов.

 Рост грибов происходит при определнных условиях: наличие источников питания – углерода, азота, водорода, неорганических соединений, содержащих калий, натрий, фосфор, магний, кальций, серу и железо; микроэлементов – марганца, цинка, молибдена, кобальта, меди, бора и др. стимуляторов роста, оптимальной температуры, степени аэрации, света и других факторов.

Все источники питания разделяются на природные (естественные) питательные субстраты и искусственные питательные среды, строго определенного состава, содержащие необходимые элементы в усвояемой форме.

Из естественных питательных субстратов используют зерно в натуральном виде, настоек или отваров (пивное сусло, кукурузный экстрат), добавляемых к искусственным питательным средам.

 Питательные вещества могут усваиваться только при определенной кислотности питательной среды, т.к. проницаемость оболочек грибов клеток изменяется в зависимости от pHсреды. Большинство грибов развиваются при pH среды 4.5-6.0. Реакция среды в процессе роста культуры грибов может значительно изменяться. Различают оптимальные условия pH среды для прорастания спор, для вегетативного развития мицелия, для спорообразования. Смещение pHвозможно для одного и того же гриба как в сторону подкисления, так и в сторону подщелачивания в зависимости от источников питания (Наумов, 1937).

 Не меньшее значение для роста грибов имеет температура их выращивания. Температурный оптимум – 22-25 градусов С.

Для хорошего развития мицелия гриба влажность воздуха в помещении должна поддерживаться в пределах 95-97%.

 Грибы растут при определенных условиях освещения. Освещение при обрастании соломы мицелием не важно.Получение в культуре плодовых тел.

 Получение в культуре нормально развитых плодовых тел является наиболее надежным способом правильного определения культуры, а для получения плодовых тел хорошо плодоносящей Pleurotus ostreatusобычно используют тот же субстрат, на котором сохраняется в лаборатории культура гриба – сусловый агар, малый агар и т.д.

Для вешенки может применяться среда Бэднона (Бэдкок, 1941,1943), состоящая из древесной муки с добавкой костной муки, картофельного крахмала, сахара и древесной золы. Богатый питательными веществами субстрат, способствующий хорошему вегетативному росту мицелия, не всегда является оптимальным для образования плодовых тел. В некоторых случаях появление плодоношения стимулирует перенос гриба на бедную среду. У Вешенки плодоношение стимулируется добавлением в питательную среду целлюлозы в виде фильтровальной бумаги или соломы.

 Время появление плодовых тел различно в зависимости от вида и штамма гриба, условий выращивания и состояния культуры.

 Свет является одним из наиболее важнейших условий для развития плодовых тел.

На первых стадия развития зачатков плодовых тел достаточно незначительного освещения, а для образования плодовых тел вешенки необходимо освещение 2000-8000 лк

в течение 14 часов. Температура, оптимальная для плодоношения часто не совпадает с оптимальной температурой для роста мицелия. Так максимум плодоношения у вешенки при температуре от 15 до 17 градусов С, а оптимум – 22 – 25 градусов С.

 Аэрация и влажность влияют на образование и формирование плодовых тел. Снабжение культур свежим воздухом с 95-97 % относительной влажности благоприятно сказывается на развитии плодовых тел. При высоком содержании в среде CO2 наблюдается появление абортивных плодовых тел и задержка в развитии шляпки, изменяются ее размеры и появляются морфологические изменения. Если воздух не обновляется, то могут образовываться лишь зачатки плодовых тел. [14]

 Выделяют два способа выращивания Вешенки обыкновенной:

 экстенсивный и интенсивный.

 Выращивание Вешенки обыкновенной экстенсивным способом.

 Вешенка обыкновенная может произрастать на стволах многих лиственных деревьев, однако наилучшими субстратными растениями для нее является тополь, ива, граб, бук и дуб. Древесина должна быть здоровой, не пораженной другими грибами. Лучше всего использовать свежесрубленную древесину, содержащую достаточное количество воды, необходимой для развития гриба. Не следует брать стволы диаметром меньше 15 см., поскольку урожайность грибов на них будет низкой. Инокуляцию мицелием производят весной, когда в подвалах (без специального подогрева) поддерживается температура оптимальная для его развития. Перед инокуляцией мицелием стволы распиливают на бруски одинаковой длины (30-35 см.), следя за тем, чтобы не испачкать их почвой. После распиливание производят вакцинацию брусков. Затем их устанавливают в подвалах, вертикально друг от друга, инокулируя один конец мицелием. На этот конец, инокулированный конец следующего бруска, а его противоположный конец инокулируют. Высоту столба доводят до 2-2.5 м. Слой мицелия на брусках должен быть не менее 1 см. толщиной. На верхний брусок сверху помещают доску толщиной 5-6 см. На нее наносят слой соломы и слой почвы высотой15 – 20 см. Это способствует поддержанию влажности и постоянной температуры субстрата, хорошему росту мицелия. Через такую “покрышку” бруски получают достаточное количество воздуха. Относительная влажность воздуха должна быть выше 90%. Через 2-3 месяца мицелий хорошо развивается по всему бруску. [12]

 Затем бруски пронизанные мицелием следует перенести для плодоношения на лесные поляны, приусадебные участки, где достаточно много влаги (но не грунтовой) и нет прямых солнечных лучей. Бруски вкапывают таким образом, чтобы их нижняя часть на несколько сантиметров была погружена в почву. Плодовые тела появляются через 1 – 3 недели после перенесения брусков.[11]

 Плодоношение длится 3 – 5 лет. Наибольший урожай вешенка обыкновенная дает на первом году плодоношения. В последующие годы бруски особого ухода не требуют.

 Таким образом экстенсивный способ культивирования вешенки обыкновенной прост, дешев, однако качество и количество урожая в большей мере зависит от факторов внешней среды, поэтомурегулировать этот процесс невозможно. Указанные недостатки устраняются при интенсивных способах выращивания. [16]Выращивание вешенки обыкновенной интенсивным способом.

При интенсивном выращивании грибов вешенки одним из лучших субстратов является солома озимой пшеницы. Перед проведением пастеризации солому необходимо измельчить от 30 – 80 мм до 14 мм. Для этих целей можно использовать различные измельчители соломы. Если партия соломы небольшие, можно ее измельчать секатором или садовыми ножницами.

В качестве добавок к субстрату можно применять измельченные стержни початков кукурузы, а также подсолнечную шелуху до

 15 – 20% от общего веса субстрата. В качестве органических добавок можно использовать отруби – от 2 до 5 % общего веса субстрата.

 Измельченную солому засыпают в емкость, где будет производиться стерилизация. Емкость заполняется субстратом до ¼ части объема, заливается водой, желательно, до 25 градусов С на 15-20 минут, перемешивается и затем грязная вода сливается. Субстрат снова заливают водой,

можно горячей. Стерилизация протекает в запарке при температуре 100-110 градусов С в течение 2 часов. Поддерживают такую температуру либо пропусканием пара через запарник, либо подогревая воду электрическими тенами.

После стерилизации субстрата воду из запарника сливают и охлаждают субстрат до 25 градусов С, затем в субстрат добавляют органические добавки, предварительно также постерилизованные. После перемешивания субстрата с добавками в запарник можно вносить мицелий. Примерно на 100 кг субстрата нужно минимум 2 кг мицелия. Все опять тщательно перемешивается и вносится в полиэтиленовые мешки. Можно вносить мицелий непосредственно в процессе заполнения мешков субстрата – послойно. Субстрат с добавками и мицелием переносят в полиэтиленовые мешки размером 40 — 45 см х 80 – 90 см. Желательно, чтобы в мешок помещалось до 10 – 15 кг стерилизованного субстрата.

Предварительнов мешках пробойником делают отверстия диаметром 15 – 20 мм. На расстоянии 10 х 10 см по углам квадрата пробивают по одному отверстию [10].

 Мешки предварительно стерилизуют в двух процентном растворе хлорной извести или в 0,01% растворе марганцовки. Мешки заполняются на 2/3 объема субстратом. При заполнении мешков субстрат не утрамбовывают, а укладывают плотной равномерной массой, без воздушных промежутков. Затем мешки не туго завязывают и переносят в проростное помещение. Проростное помещение перед внесением туда субстрата дезинфицируют. Стены и пол промывают 1% раствором хлористой щелочи, затем проводятокуривание формальдегидом. На 100 м3 помещения необходимо 2 литра40% формалина и 400 гр. хлорной извести. Равномерно по площади помещения устанавливают емкости, желательно стеклянные, фарфоровые или эмалированные. Равномерно в них насыпают хлорную известь и заливаютформалином. Помещение на 2 – 3 суток закрывают, а затем в течение 3 – 4суток проветривают.

Помещение опрыскивают 4% раствором хлорной извести. Приготавливают раствор, выдерживают его в течение 2-х часов, взбалтывают и опрыскивателем обрабатывают помещение. Закрывают помещение на двое суток, а затем интенсивно вентилируют в течение 5 – 7 дней.Проводят опрыскивание помещения раствором формалина – раствор готовится из расчета 250 мл 40% формалина на 10 л воды. Расход раствора на 100 м3 помещения примерно 20 л. Помещения обрабатывают опрыскивателем, закрывают на двое суток, а затем в течение 4-х дней интенсивно проветривают.Обработку горящей серой проводят из расчета 500 гр серы на 100 кубических метров помещения. Серы медленно сжигают в емкостях, установленный на электрических печках в помещении.

Через два дня помещения проветривают в течение 3 – 4 дней.В случае появления грибных мух, в культивационных помещениях проводят окуривание в течение 2 – 4 часов препараторами монофоса, карбофоса или пагоса из расчета 800 гр на 100 кубических метров помещения.

 Мешки в проростном помещении устанавливают друг на друга, не более чем в 2 – 3 ряда.

 Температура в проростном помещении должна составлять 22 – 25 градусов С, а в мешках с субстратом – не более 28 градусов С.

Влажность воздуха поддерживается в пределах 95 – 97. Освещение при обрастании соломы мицелием не нужно.

В случае появления в мешках инфицированных участков, они должны быть удалены и обработаны раствором поваренной соли из расчета 250 гр на 1 л. Соль лучше растворять в горячей воде.

 После зарастания субстрата мицелием мешки переносят в растительное помещение и развешивают согласно принятой для каждого культивационного помещения схеме.

 Температура в растительном помещении поддерживают в пределах от 15 до 17 градусов С. Влажность – 95 – 97%. Нежелательно попадание крупных капель на мешки с субстратом и сбор воды на полу.

 При росте плодовых тел в растительном помещении необходимо освещение в течение 12 часов в сутки. Интенсивность освещения необходимого для нормальной пигментации достаточно в пределах от 100 до 180 люксов.

 Допустимая концентрация в помещении углекислого газа – не более 1%. Для этого, в помещении необходимо включат вентиляцию 4 – 6 раз в течение световой части суток. [22]

 Грибы желательно срезать ножом так, чтобы на мешках не оставалось частей плодовых тел. В случаях реализации грибов в свежем виде их лучше сразу укладывать в полиэтиленовые пакеты весом до 500 гр. Затем укладывать пакеты в контейнеры и отправлять сразу в холодильник или на реализацию.

 После сбора грибов, примерно через 2 недели начинается 2 волна урожая. В первую волну обычно собирают до 60 – 70% урожая, вторая волна дает 15 – 20% и третья около 10%. Обычно выращивают и убирают урожай первой и второй волны.

При соблюдении технологического процесса с 10 кг субстрата минимальный сбор грибов за 1 ротацию составляет около 3 кг. В одном культивационном помещении за год проводится как минимум 3 ротации.

 Отработанный субстрат можно использовать в качестве добавок для скота. Он содержит много белковых веществ, в том числе почти все незаменимые аминокислоты. На его основе можно готовить жидкий корм для свиней, кур и других животных. [16]

 Урожай грибов по каждому из изучаемых вариантов опыта проводился, путем взвешивания каждого варианта с 10 кг субстрата.

 Данные урожая грибов и скорости обрастания субстрата – соломы озимой пшеницы подвергались математической обработке методом дисперсионного анализа (В. Н. Доспехов, 1987) с помощью ЭВМ. Экспериментальный материал изложен в двух главах. 1.3 Схема опытов

Исследования проводились по единой программе в лабораторных условиях совхоза декоративных растений расположенного в г. Воронеже 1997-1998 гг. СХЕМА ОПЫТАКонтроль (выращивание без регулятора роста).Гетероауксин в дозе 0,005%Гиббериллин в дозе 0,005%Гибберсиб в дозе 0,005%Гумат натрия в дозе 0,005%Парааминобензойная кислота в дозе 0,005%

 Обработка субстрата соломы озимой пшеницы регуляторами роста происходит во время внесения в него зернового мицелия.2. Регуляторы роста, их значение при выращивании грибов вешенки обыкновенной

 После того, как физиологам стали доступны достаточные количества химически чистого кристаллического препарата гетероауксина, работа по изменению действий этого регулятора роста на растительный организм получили огромных размах. И уже после открытия и синтеза гетероауксина было испытано действие на растительный организм других органических кислот типа гетероауксина. В настоящее время синтезировано большое количество органических соединений, обладающих физиологической активностью, подобно гетероауксину, но не обнаруженных в растительном организме. Все эти вещества называют синтетическими регуляторами роста.

 Естественные и синтетические регуляторы роста получили широкое распространение при исследованиях возможности воздействия на растительный и грибной организм с целью управления их ростом и развитием. Было проведено большое количество исследований по выяснению свойств регуляторов

роста и их физиологической роли, распространение регуляторов роста в растительном мире, способов их передвижения по тканям.

 Оказалось, что регуляторы роста не являются специфичными, т.е. будучи образованны в одном организме, они эффективны по отношению к другим, под час систематически далеким. Скорость распространения регуляторов роста по тканям значительно превышает скорость обычно диффузии. Движение регуляторов роста в организме происходит главным образом полярно, т.е. в одном направлении.

Воздействие одного и того же физиологически активного вещества может вызвать различную реакцию организма. На основании этого многие ученые высказали предположение о поливалентности действия регуляторов роста.

 Физиологически активные вещества находятся в растительных продуктах – в муке, солоде, растительных маслах. Ауксины найдены в тканях высших животных, в слюне и моче. Есть предположение, что они попадают в животный организм с растительной пищей, богатой ауксинами. Интересно в этом отношении опыты, показавшие, что при гидролитическом распаде арахисового масла под влиянием фермента липазы образуются ауксины. Для образования ауксинов плесневые грибы и бактерии нуждаются в питательной среде, содержащей глюкозу, а также триптофан, тирозин и другие аминокислоты. [6]

 Сказанное выше дает нам право говорить о целесообразности применения регуляторов роста при интенсивном выращивании вешенки обыкновенной. Это предположение подтверждается ниже.

Регуляторы роста представляют следующие группы органических соединений: Ауксины – преимущественно соединения индольного характера; Гиббереллины – органические кислоты родственной структуры, относящиеся к алициклическим соединениям флуоренового ряда;Кинины – производные пуриновых оснований; Ингибиторы – соединения полифенольной природы.2.1 Влияние гетероауксина на скорость “прорастания” зернового мицелия

 В 1931 году голландским химикам Кеглю и Хаген-Смиту удалось выделить из человеческой мочи вещество, названное ими ауксином. Они полагали, что это вещество стимулирует рост по средством растяжения клетки. Близкое к этому веществу, выделенное из кукурузного масла, было названо ауксином – б в отличие от вещества, выделенного из мочи и названного ауксином – а.

Затем эти же ученые выделили из мочи человека вещество названное ими гетероауксином, что означает “другой ауксин”. Химический анализ показал, что гетероауксин тождествен индолилуксусной кислоте, синтез которой известен с 1885 года. [6]

 Ауксины представляют собой кислоты, в состав которых входит ненасыщенное циклическое ядро, или их производные.

 Гетероауксин, представляющий собой бета-индолилуксусную кислоту, успешно синтезируемую в достаточно широких масштабах.

Гетероауксин по праву считается основным ауксином, в соотношении, с которым определяется активность других ауксинов. Самым характерным физиологическим действием ауксинов является растяжение клеток, участвует в инициации корнеобразования при ингибировании его роста, доминировании верхушки ингибировании почкования, дифференциации и партенокарпии роста плодов. Активирует выведение протонов и захват К+ в чувствительных клетках; ионы водорода прямо или косвенно (путем воздействия на ферменты) увеличивают пластичность клеточных стенок, обеспечивая расширение клетки в ответ на клеточное тургорное давление. Ауксины действуют также на уровне экспрессии генов. [6,10]

 При экзогенном действии гетероауксин оказывает неспецифическое действие: низкие концентрации порядка 10-12 – 10-4 м (в зависимости от чувствительности объекта) стимулируют, более высокие (10-3 – 10-2 м) – угнетают рост.

 Согласно теории Холодного-Вента гетероауксин образуется в точках роста из неактивного предшественника и, опускаясь базипетально, способен поляризоваться, т.е.

распределяться неравномерно под действием бокового освещения или силы тяжести.

 Такое неравномерно распределение приводит к усилению роста на одной из сторон.

 Полученные в результате проведенных нами исследований по влиянию регуляторов роста растений на скорость прорастания зернового мицелия вешенки обыкновенной в субстрате – соломе озимой пшеницы представлены в таблице 2.1Таблица 2.1Влияние гетероауксина на скорость прорастания зернового мицелия вешенки обыкновенной (1997-1998 гг.)

№ п/п

Варианты опыта

1997 год

1998 год

Среднее значение

1 ротация

2 ротация

1 ротация

2 ротация

1

Контроль

29,6

30,8

31,3

31,0

31

2

Гетероауксин 0,005%

25,0

25,8

25,2

25,3

25

Из полученных результатов видно, что гетероауксин в дозе 0,005 оказал положительное влияние на скорость прорастания зернового мицелия в соломе озимой пшеницы. Так, в варианте опыта, где субстрат обрабатывали 0,005% растворе гетероауксина полное обрастание соломы мицелием наступило на 25 день, в то время как на контрольном варианте лишь на 31 день.    продолжение
--PAGE_BREAK--