Лекция: ТЕМА 2. Пластиды и запасные вещества растительной клетки

Оборудование:

· микроскоп биологический рабочий, микроскоп биологический стереоскопический, предметные и покровные стекла, препаровальные иглы, пинцет, скальпель, бритва, фильтровальная бумага, пипетка, склянка с водой, реактив Люголя

· свежие материалы: листья элодеи канадской и мниума, плоды шиповника, рябины, корнеплод моркови, клубень картофеля, лист зебрины пурпурной, мякоть арбуза

· постоянный препарат поперечного среза корнеплода моркови

Работа 1. Хлоропласты в листе элодеи канадской (Elodea canadensis) или мниума (Mnium sp.)

1. Пинцетом оторвать лист и положить в каплю воды под покровное стекло.

2. Рассмотреть лист при слабом увеличении. Схематично зарисовать общую форму листа, указать среднюю жилку и межклетники, заполненные газом.

3. В центр поля зрения поставить область средней жилки и рассмотреть ее при сильном увеличении. Зарисовать одну типичную клетку. Отметить оболочку, вакуоль, постенный слой цитоплазмы и хлоропласты с зернами первичного крахмала. По перемещению хлоропластов пронаблюдать движение цитоплазмы вдоль оболочки.

4. Снять препарат со столика микроскопа, приподнять покровное стекло, прибавить каплю реактива Люголя и снова наложить стекло. Рассмотреть и нарисовать окрасившиеся ядра и зерна крахмала внутри хлоропластов.

Хлоропласты также можно изучать на других однослойных листьях (мниума и др.).

Работа 2. Хромопласты в плоде рябины (Sorbus aucuparia),

оболочке соплодия шиповника (Rosa sp.) и корнеплоде моркови (Daucus carota)

1. Скальпелем надорвать кожуру плода рябины, извлечь иглой немного мякоти и распределить ее в капле воды на предметном стекле.

2. При слабом увеличении выбрать несколько клеток, а при сильном увеличении рассмотреть их и зарисовать. Обратить внимание на цвет, число и характерную форму хромопластов (изогнутые, сильно вытянутые, заостренные).

3. Аналогично приготовить временный препарат, рассмотреть и зарисовать хромопласты шиповника. Отметить их преимущественно округлую форму.

4. Рассмотреть постоянный препарат поперечного среза корнеплода моркови. На тонкой части среза отыскать клетки с длинными игольчатыми хромопластами и зарисовать их.

Хромопласты можно также посмотреть в клетках мякоти плода арбуза под стереоскопическим микроскопом.

Работа 3. Запасной крахмал клубня картофеля (Solanum tuberosum)

1. Нанести каплю воды на предметное стекло. Разрезать клубень картофеля, скальпелем перенести немного сока в каплю воды и накрыть покровным стеклом.

2. При слабом увеличении найти а при сильном, изменяя величину диафрагмы, рассмотреть и зарисовать простое крахмальное зерно. Отметить эксцентрическую слоистость. Указать слои, отложенные днем (узкие, плотные, светлые) и ночью (широкие, рыхлые и более темные). На рисунке отразить характерную форму крахмального зерна, положение центра образования, характер слоистости.

3. Найти и зарисовать несколько полусложных и сложных (двойных, тройных) крахмальных зерен.

4. Рядом с покровным стеклом, не поднимая его, нанести каплю реактива Люголя. При малом увеличении проследить возникновение цветной реакции и зарисовать зерна крахмала с разной интенсивностью окраски — от бледно-лиловой до черно-фиолетовой.

Работа 4. Рафиды в клетках листа зебрины пурпурной (Zebrina purpusii)

1. Приготовить предметное стекло с каплей воды. Обернув лист нижней стороной наружу вокруг указательного пальца левой руки, сорвать пинцетом небольшой кусочек эпидермы. Положить их в каплю воды и накрыть покровным стеклом.

2. На слабом увеличении найти и зарисовать высыпавшиеся из поврежденных клеток отдельные игольчатые кристаллы а также клетку с рафидами (пучком параллельных игольчатых кристаллов).