Реферат: Методика эутоназии опытных животных 71 Изучение сравнительной иммунологической эффективности и антигенных свойств противобруцеллёзных вакцин из штаммов В.

www.diplomrus.ru ®

Авторское выполнение научных работ любой сложности – грамотно и в срок

Содержание

Содержание


Введение 3


1. Обзор литературы 7


1.1. Характеристика бруцеллёза маралов 7


1.2. Роль специфической профилактики в системе противобруцеллёзных мероприятий у животных 16


1.3. Живые противобруцеллёзные вакцины 19


2. Собственные исследования 34 2.1. Материалы и методы исследования 34


3. Результаты исследования 45


3.1. Биологические особенности маралов и система ведения


пантового оленеводства 45


3.2. Противоэпизоотическая эффективность вакцины из штамма


В. abortus 82 при бруцеллёзе маралов в Алтайском крае 48


3.3. Изучение приживаемости и возможности миграции


вакцинного штамма 75/79-АВ в организме маралов 53


3.4. Изучение иммуногенных свойств вакцины из штамма


В. abortus 75/79-AB, определение оптимальной иммунизирующей дозы 57


3.4.1. Методика эутоназии опытных животных 71


3.5. Изучение сравнительной иммунологической эффективности


и антигенных свойств противобруцеллёзных вакцин из штаммов


В. abortus 82 и В. abortus 75/79-AB в опыте на маралах 75 3.5.1. Патоморфологические изменения при экспериментальном


бруцеллёзе маралов 100


Обсуждение полученных результатов 108


Выводы 119


Практические предложения 121


Библиографический список 122


Приложение 142

Введение


3 Введение


Актуальность темы. Пантовое оленеводство — динамично развивающая отрасль сельского хозяйства, дающая два вида продукции: основную (панты) и побочную (мясо, кровь, хвосты, пенисы, жилы, зародыши), которые, в свою очередь, служат ценным лекарственным сырьем, применяемым в восточной и отечественной медицине для лечения различных заболеваний. Существенным сдерживающим фактором её развития являются инфекционные заболевания, одно из которых - бруцеллёз.


Бруцеллёз сельскохозяйственных животных является распространённой . инфекционной болезнью, поражающей животных всех видов и представляющей серьёзную угрозу здоровью людей.


Уже давно стало очевидным, что успешная борьба с этой зооантропоноз-ной инфекцией в широких масштабах практически невозможна без использования средств специфической профилактики (Косилов И.А., 1985, 1992; Шумилов К.В., 1987; Салмаков К.М., 1975, 1987; Димов С.К., 1993 и др.). Необходимость их применения особо возрастает в связи с изменениями, происходящими в агропромышленном комплексе нашей страны: расформирование колхозов, совхозов, создание акционерных обществ, фермерских хозяйств, расширение и увеличение крестьянских подворий.


Существуют различные типы противобруцеллёзных вакцин, но наибольший интерес вызвали живые вакцины из штаммов В. abortus 19 и 82. В настоящее время как на крупном рогатом скоте, так и на маралах используется вакцина из слабоагглютиногенного штамма В. abortus 82. Указанная вакцина обладает достаточно высоким уровнем иммуногенности и противоэпизоотической эффективности, однако имеет и ряд недостатков, связанных, прежде всего, с нестабильностью её биологических свойств, а также абортогенностью (Димов С.К., 1993; Климанов А.И. с соавт., 1983; Новицкий А.А., 1988; Ощепков В.Г., 1998). Результаты применения этой вакцины на маралах свидетельствуют о ещё


4


одной негативной стороне - длительном сохранении поствакцинальных реакций (от 12-18 месяцев и до 5 лет после иммунизации).


Таким образом, очевидна необходимость поиска новых, современных противобруцеллёзных вакцин. Одной из таких вакцин является вакцина из штамма В. abortus 75/79-AB, которая была селекционирована и комплексно изучена И.П. Никифоровым (1996) на крупном рогатом скоте.


Апробация данной вакцины в производственных условиях показала, что её применение в общем комплексе противобруцеллёзных мероприятий позволяет резко ослабить напряженность эпизоотического процесса в течение 6-8 месяцев и добиться ликвидации очагов бруцеллёза крупного рогатого скота в более короткие сроки. Кроме того, вакцина не абортогенна, популяция микробных клеток однородна, угасание серологических реакций наступает через 2-3 месяца после иммунизации.


Все это позволяет считать работу с этой вакциной весьма перспективной, а её испытание на маралах - актуальным.


Цель исследований — изучить основные свойства вакцины из штамма Brucella abortus 75/79-AB на маралах.


Для выполнения указанной цели в задачи исследования входило:


1. Изучение эпизоотической ситуации по бруцеллёзу маралов в Алтайском крае и противоэпизоотической эффективности вакцины из штамма В. abortus 82.


2. Изучение приживаемости и возможности миграции вакцинного штамма 75/79-АВ в организме маралов.


3. Изучение иммуногенных свойств вакцины из штамма В. abortus 75/79-AB на маралах, отработка оптимальной иммунизирующей дозы.


4. Изучение сравнительной иммунологической эффективности и анти-


генных свойств вакцин из штаммов В. abortus 82 и В. abortus 75/79-AB в опыте на маралах.


Научная новизна. Впервые на маралах изучены приживаемость, возможность миграции, а также иммуногенные свойства вакцины из штамма 75/79-АВ,


5


при этом определена оптимальная иммунизирующая доза. Проведена сравнительная оценка иммуногенных и антигенных свойств вакцин из штаммов В. abortus 82 и В. abortus 75/79-AB на маралах; отработана методика эутоназии маралов миорелаксантом «Адилин-супер».


Практическая значимость. В ходе проведённых исследований разработаны рекомендации «Диагностика, профилактика и меры борьбы с бруцеллёзом маралов» (2005), утвержденные учёным советом ВНИИПО (протокол № 1 от 11 февраля 2005 г.), и рекомендованы к внедрению научно-техническим советом управления ветеринарии администрации Алтайского края (протокол № 2 от 18 марта 2005 г.).


Апробация работы. Результаты исследований доложены, обсуждены и одобрены на научно-практической конференции молодых учёных «Вопросы пантового оленеводства и болезней сельскохозяйственных животных» (г. Барнаул, 2003); региональной научной студенческой конференции «Достижения и перспективы студенческой науки в АПК» (г. Барнаул, 2003); Международной научно-практической конференции молодых учёных СО РАСХН «Новейшие направления развития аграрной науки в работах молодых учёных» (Новосибирская область, п. Краснообск, 2004); Международной конференции «Развитие международного сотрудничества в области изучения инфекционных заболеваний» (Новосибирская область, ГНЦ ВБ «Вектор», 2004), учёных советах ВНИИ пантового оленеводства (2001-2004) и научно-техническом совете управления ветеринарии администрации Алтайского края (2005).


Публикация результатов исследований. Основные положения диссертации отражены в 7 научных работах. Научные исследования, изложенные в диссертации, являются составной частью научных проблем Всероссийского научно-исследовательского института пантового оленеводства, тема № 02.01.01.


Выносятся на защиту:


1. Анализ эпизоотической ситуации по бруцеллёзу маралов в Алтайском крае и противоэпизоотической эффективности вакцины из штамма Brucella abortus 82.


2. Приживаемость и возможность миграции вакцинного штамма Brucella abortus 75/79-АВ в организме маралов.


3. Определение иммуногенных свойств вакцины из штамма Brucella abortus 75/79-АВ, изыскание оптимальной иммунизирующей дозы для маралов.


4. Определение сравнительной иммунологической эффективности и антигенных свойств вакцин из штаммов Brucella abortus 82 и Brucella abortus 75/79-АВ на маралах.


7 1. Обзор литературы


1.1. Характеристика бруцеллёза маралов


Бруцеллёз маралов - хроническая инфекционная болезнь, проявляющаяся часто абортами, задержанием последа, расстройством воспроизводительной функции животных. Инфекция от животных может передаваться человеку (Лу-ницын В.Г., 1998, 2004).


Из пантовых оленей к бруцеллёзу восприимчивы только маралы (Третяк Н.Т., Хорьков И.А., 1978), особенно маралухи и маралушки в возрасте половой зрелости (Третяк Н.Т., 1984). Проявление инфекции наблюдается чаще в виде спорадических случаев, возможны и эпизоотические вспышки при отсутствии соответствующего ветеринарного контроля.


Клиническая картина заболевания в виде бурситов, артритов, абортов наблюдается очень редко (Третяк Н.Т., 1984). По данным Н.Т. Третяка (1985) из 5262 обследованных маралов лишь 9 голов были с поражениями суставов и 8 голов с баланопоститами. В другом сообщении (1981) автор утверждает, что клиническую форму бруцеллёза он наблюдал у 47 естественно больных маралов (у 37 - бурситы, 2 - орхиты, 7 — артриты, 1 — тендениты и тендовагиниты). Поскольку территория парка занимает несколько десятков гектаров, покрытых лесом и кустарником, и маралухи во время отёла прячутся в высокой густой траве, наблюдать аборты в естественных условиях практически невозможно. В эксперименте же они наступают на 6-8-м месяце беременности (Третяк Н.Т., 1972).


Первоначально заболевание у маралов диагностировалили по серологическим реакциям: реакции агглютинации (РА) и реакции связывания комплимента (РСК). Об этом свидетельствуют исследования А.Ф. Пинигина с соавторами (1966), которые из 524 маралов в 3 хозяйствах Горного Алтая выявили реагирующих в РА - 22,6% и РСК - 10%. В последующем Н.Т. Третяк (1971) из 260 рогачей карагайской фермы совхоза «Абайский» выявил в РА - 21 реагирую-


8 щее животное, в РА с кольцевым антигеном - 14, а в РСК - 20. За период с 1969


по 1973 гг. в совхозе «Абайский» среди разных половозрастных групп было выявлено 1,13% реагирующих в серологических тестах животных (Третяк Н.Т., 1981). По другим данным Н.Т. Третяка (1972), в 1970-1971 гг. на бруцеллёз в совхозе «Абайский» исследовано в РА и РСК 997 рогачей и 593 маралухи. Из них реагировало 147 голов (14,7%) рогачей, а маралух — 202 головы (34,06%). Общий процент реагирующих маралов составил 21,9.


На других фермах, за период с 1969 по 1971 гг., совхозов «Амурский» и «Чергинский» исследовано 697 маралов, из которых 147 голов (21,1%) реагировали в РСК и 93 (13%) — в РА. На «Талдинской» маралоферме из исследованных 611 маралух и 487 маралов-рогачей реагировали соответственно 44 (7,2%) и 130 (2,69%) животных. На ферме «Курдюм» реагировали маралята после отбивки. Процент серопозитивных в разные годы колебался от 3,06 до 7,9.


Выделение культуры бруцелл из биоматериала является наиболее достоверным свидетельством наличия инфекции. Впервые это удалось сделать О.В. Постричевой в 1963 г., от реагирующих в серологических тестах маралов. Несколькими годами позже М.М. Ременцовой и другими исследователями (1969) были выделены бруцеллы вида Brucella suis, a H.T. Третяк (1971) при исследовании биоматериала от 4 маралов (лимфатические узлы, печень, селезёнка) изолировал возбудитель бычьего вида - Brucella abortus, 6-го биотипа. У диких маралов при бактериологическом исследовании материала, бруцеллёз не обнаружен (Пинигин А.Ф., 1971).


Возбудитель бруцеллёза маралов (Brucella abortus) полиморфен, встречаются кокковые, овоидные и палочковидные формы (0,6 х 1,5 х 0,5-0,7 мкм). Бруцеллы неподвижны, хорошо красятся анилиновыми красками, грамотрица-тельны. Лучший рост наблюдается на печоночных средах с добавлением глицерина и глюкозы (Ml 1111 ГА, Ml 1111 ГБ). По характеру роста на плотных средах различают S — типичные, гладкие, R — шероховатые и М - слизистые варианты


9 колоний. Возможна их трансформация в L-формы (Третяк Н.Т., 1972, 1996;


Луницын В.Г., 1998,2004).


Устойчивость бруцелл к физико-химическим факторам невысокая. Так, Н.Т. Третяком (1972) было установлено, что при температуре 60°С они погибают за 30 мин, при 70°С - за 5-10 мин, а при 90-100°С - моментально. Быстро погибают в гниющем материале, прямые солнечные лучи убивают их за 3-4 часа, растворы креолина, фенола (1%-ные) - за 1 час, 5%-ная свежегашеная известь — за 2 часа. В почве, навозе, воде, грубых кормах возбудитель сохраняется до 4-5 месяцев.


Источником болезни являются больные бруцеллёзом животные, которые выделяют возбудитель во внешнюю среду с мочой, калом, околоплодными водами, плодными оболочками, истечениями из половых органов, абортированными плодами. Особенно опасны животные в период выраженного клинического проявления болезни. Кроме того, источником инфекции для маралов может быть больной бруцеллёзом крупный рогатый скот, но ведущими факторами всё же остаются предметы ухода за животными, водоисточники, корма, почва и т.д. Маралята, как правило, заражаются бруцеллёзом алиментарно; взрослые алиментарно и контактно половым путём через слизистую оболочку и кожу. Особенно важен у маралов половой путь передачи инфекции из-за своеобразия гона, когда больной рогач может заразить весь гарем - 15-20 маток (Третяк Н.Т., 1982).


Бруцеллёз на маральник может быть занесён при бесконтрольном обмене высокопродуктивными рогачами, а также при контакте маралов с больным крупным рогатым скотом у изгородей. На отдельных маралофермах инфекция регистрируется по причине их строительства на месте бруцеллёзных изоляторов крупного рогатого скота (Третяк Н.Т. и др., 1975).


Распространению заболевания внутри стада способствуют скученное содержание животных в зимний период, особенности гона и нахождение маралят на подсосе в течение 5-6 месяцев. При невыполнении противобруцеллёзных


10 мероприятий болезнь может поразить до 30% поголовья стада (Третяк Н.Т. и


др., 1975).


При любых способах проникновения в организм бруцеллы по лимфатическим путям попадают в паренхиматозные органы - лимфатические узлы, печень, селезёнку, почки. Там и происходит развитие инфекционного процесса. При этом принято выделять 3 фазы: регионарная инфекция, генерализация и вторичная латенция (Луницын В.Г., 1998, 2004). В первую фазу инфекционного процесса серологические показатели чаще отрицательные. Такие животные являются бактерионосителями и выделяют возбудитель в окружающую среду. Вторая фаза отмечается во второй половине беременности, поскольку общая резистентность в этот период снижается. Бруцеллы, попадая в кровь, заносятся в матку и на поверхности хориона вызывают гнойно-некротические процессы, приводящие к нарушению питания плода, его гибели и аборту. Кроме того, воспалительный процесс с явлениями некроза может развиваться в различных органах и тканях, а внешне проявляться орхитами, бурситами и т.д. (Третяк Н.Т., 1972).'В третью фазу, фазу латенции, животное клинически выздоравливает, но сохраняет возможность длительное время выделять возбудитель во внешнюю среду.


Инкубационный период при бруцеллёзе (время от заражения до появления серологических реакций) зависит от вирулентности возбудителя, дозы заражения, ворот инфекции, возраста, пола и физиологического состояния животного. В эксперименте на маралах он равен 6-20-и дням: антитела появляются на 6-10-й день после заражения, но стабильнее выявляются с 20-30-го дня. Агглютинины начинают выпадать с 70-80-го дня, комплементсвязывающие антитела — спустя 96 дней (Третяк Н.Т., 1972).


Изменения в органах и тканях маралов при искусственном их инфицировании патогенным штаммом бруцелл изучал Н.Т. Третяк (1975). Чаще всего патология обнаруживается в печени, селезёнке, лимфатических узлах, где отмечается гиперплазия ретикулоэндотелиальных клеток с образованием бруцеллёз-


11


ных гранулём из эпителиоидных, гигантских, гистиоцитарных, лимфоидных и плазматических клеток. Этот процесс, как правило, сопровождается дистрофическими изменениями во внутренних органах белкового и жирового характера (Третяк Н.Т., 1972).


Взять биоматериал для исследования при жизни животного (абортированный плод, плодные оболочки, влагалищная слизь) не представляется возможным из-за нахождения маралов на обширных парковых территориях. Неоднократно предпринимались попытки взять плодные оболочки у серопозитивных маралух, изолированных в отдельном зимнике, но все они оказались безрезультатными. Защищая маралёнка, маралуха бросалась на человека, быстро съедала послед (Луницын В.Г., 1998, 2004).


Исходя из вышесказанного, основным методом прижизненной диагностики бруцеллёза маралов является исследование проб сывороток крови в серологических тестах - РА, РСК (Третяк Н.Т., 1975).


Для определения нормальных титров агглютининов было исследовано 1870 проб сывороток, взятых от маралов 5 хозяйств, благополучных по этой инфекции. При этом выявлена положительная РА в титрах до 1:5 - у 943 (50,43%), 1:10-у 628 (33,58%), 1:20-у 174 (9,31%), 1:30-у 104(5,56%), 1:40-у 21 (1,12%) голов. Причём РА в разведении 1:40 была не выше чем два креста. В титрах от 1:50 до 1:400 ни одно из животных не реагировало.


На основании этих данных установлено, что маралы, дающие РА в титрах 1:50 и выше, заражены бруцеллёзом, а титры от 1:10 до 1:40 являются показателем степени иммунологической зрелости организма и нормального функционирования иммунной системы (Третяк Н.Т., 1996). Для подтверждения этого вывода с диагностической целью были убиты из разных благополучных по бруцеллёзу хозяйств 92 марала, имеющие титры в РА от 1:20 до 1:40, и 62 марала из неблагополучных хозяйств, имеющие титры от 1:50 до 1:800. От животных данных хозяйств был отобран материал для заражения. Биоматериалом от


12 первой группы было инфицировано 46, а от второй - 42 морские свинки (Тре-


тякН/Г. и др., 1975).


При бактериологическом и биологическом исследовании материала от убитых маралов благополучных хозяйств бруцеллы не выявлены, в то время как от маралов из неблагополучных хозяйств выделено 26 культур бруцелл вида Brucella abortus, 6 биологического типа (Третяк Н.Т., 1972).


По результатам научных работ доказано, что при однократном серологическом исследовании выявляются до 50-70%, а при двукратном — 80-90% серо-позитивных животных. При обнаружении антител в сыворотке крови в РА в титрах меньше 1:50 результат оценивается как сомнительный. Таких животных исследуют повторно через 15-30 дней. Если титры в РА нарастают, то животных признают больными, при их неизменности или снижении — здоровыми (Третяк Н.Т., 1972).


Для специфической профилактики бруцеллёза маралов первоначально использовалась вакцина из штамма В. abortus 19, а затем В. abortus 82. Прежде чем рекомендовать данные препараты Н.Т. Третяком (1972, 1975, 1981, 1990) были проведены экспериментальные и производственные опыты.


Вакцину из штамма 19 вводили по 5 мл подкожно в область средней трети шеи в дозе крупного рогатого скота. В результате проведённых исследований по изучению свойств указанного препарата Н.Т. Третяком (1972, 1975) был сделан вывод, что антитела у животных появляются с 7-8-го дня после прививки в титрах от 1:50 до 1:1600, максимума их количество достигает на 13-16-й день, затем наблюдается медленное угасание, которое заканчивается к 100-115-му дню. Однократная иммунизация штаммом 19 предохраняет 66-94% привитых маралов от заражения бруцеллёзом на срок не менее 8 месяцев. Причём через 4 месяца иммунитет сохраняется у 94%, а через 8 - у 66% опытных животных.


Сухая живая вакцина из штамма 82 разводится в стерильном остуженном 0,85%-ном растворе хлорида натрия из расчёта 1 доза на 5 мл физраствора, вво-


13


дится подкожно в область средней трети шеи. По итогам эксперимента, проводимого на 184 животных, антитела у опытных маралов в РА выявляются в первые 30 дней, но не выше чем в титрах от 1:50 до 1:200, процент реагирующих составляет не более 5,05. Комплементсвязывающие антитела также выявляются в первые 30 дней, но показатели сомнительные (два креста) и не более чем у 2,24% животных. Данные антитела исчезали к 93 дню и не восстановились через 225 - 290 дней (Третяк Н.Т., 1981). При заражении вирулентными культурами привитых 82 штаммом маралов агглютинины не выявлены, комплементсвязывающие антитела появились в первые 20 дней (два и три креста).


Вакцина из штамма В. abortus 82 предохраняет в опыте 83,3-94,4% иммунизированных указанным препаратом животных на срок не менее 290 дней. Причём через 7,5 месяцев иммунитет сохраняется у 94,4%, а через 9,5 - у 83,3% маралов. Все приведённые данные указывают на целесообразность её применения в комплексе мероприятий по профилактике и борьбе с бруцеллёзом маралов (Третяк Н.Т., 1990).


Профилактика бруцеллеза основана на выполнении основных ветеринар-но-санитарных правил по охране благополучных хозяйств от заноса в них возбудителя инфекции. Для этого маралофермы комплектуют заведомо здоровыми животными из благополучных хозяйств, исключая контакт пантовых оленей с крупным рогатым скотом. Животных, поступающих в хозяйство для комплектования стад, карантинируют на 30 дней и в этот период независимо от хозяйства-поставщика исследуют на бруцеллез. Только при получении отрицательных результатов по РА и РСК их переводят в общее стадо (Третяк Н.Т., 1972).


Для контроля благополучия маралоферм по бруцеллезу ежегодно в РА и РСК исследуют 10-15% поголовья основного стада. Маралов-рогачей и перво-рожков исследуют в период панторезной кампании, (кровь берут из срезанного панта), остальное поголовье — в ноябре-декабре, при отъеме молодняка и постановке на зимнее содержание (Третяк Н.Т. и др., 1978).


14


При установлении у животных бруцеллеза на хозяйство (ферму) накладывают ограничения и проводят специальные противобруцеллезные мероприятия, направленные на изоляцию и убой реагирующих по серологическим реакциям животных и постепенную замену неблагополучного поголовья молодняком, привитым противобруцеллезными вакцинами из штаммов 19 или 82 (ТретякНЛ1., 1972).


В неблагополучных по бруцеллезу хозяйствах, учитывая сезонные биологические ритмы, присущие маралам (рост пантов, их срезка, гон, беременность, вынашивание приплода и т.д.), взятие крови для серологического исследования в РА и РСК проводят в определенные сроки: у маралов-рогачей и перворожков - в период срезки пантов (май-июль), а далее с середины ноября до сброса коронок (март); у маралух - с ноября по январь; у телят текущего года рождения -с ноября по март (Третяк Н.Т. и др., 1972).


В указанное время маралов исследуют на бруцеллез через каждые 30-45 дней, но не менее 3-4 раза в год до получения отрицательного результата в РА и РСК по всей мараловодческой ферме. Через 6-8 месяцев после последнего исследования проводят контрольное исследование и в зависимости от его результатов с хозяйства или снимают ограничения, или, при выявлении реагирующих животных, работу по оздоровлению возобновляют.


На маралофермах, где установлен бруцеллез, клинически больных животных с положительными и сомнительными показателями РА и РСК и маралов с положительными РСК и РА в высоких титрах подвергают убою. Условно здо-


ровое поголовье оздоравливают без применения или с применением противо-бруцеллезных вакцин из штаммов 19 или 82, что зависит от степени распространения болезни (Третяк Н.Т. и др., 1975).


Организация оздоровления с помощью вакцинопрофилактики имеет преимущество в том, что здесь средством предупреждения распространения инфекции является не только воздействие на источники и факторы передачи ин-


15


фекции, но и создание мощного барьера из иммунизированных животных (Лу-ницын В.Г., 1998, 2004).


В маралохозяйствах вакцина из штамма 82 является приемлемой для иммунизации маралов с поголовным исследованием их в РА и РСК только через 12 месяцев с момента введения вакцины.


Всех привитых маралов метят путем прокола левей ушной раковины,.а у ревакцинированных отметку делают на правом ухе либо биркуют, что гораздо удобнее.


На всех привитых животных составляется список с указанием номера, пола, возраста животных и времени прививки, а также акт на проведенную работу, в котором отражают номер, серию вакцины, дату ее изготовления, срок годности, изготовителя биоматериала.


Через 7-12 месяцев после вакцинации в основном все привитые вакциной из штамма 82 маралы при исследовании их в РА и РСК реагируют отрицательно.


В пантах больных и реагирующих животных возбудитель бруцеллеза не обнаружен. Принятые на вооружение методы консервирования пантов убивают возбудителя болезни. Поэтому из неблагополучных по бруцеллезу пунктов панты реализуют без каких-либо ограничений (Третяк Н.Т. и др., 1972).


Ограничения с хозяйства (фермы) снимают при получении 2 отрицательных результатов в РА и РСК по всей мараловодческой ферме и разрешают продажу и вывоз за пределы хозяйства животных, которые подвергались вакцинации, но отрицательно реагируют по серологическим реакциям.


При широком распространении бруцеллеза среди маралов возможна в течение 2-3 лет подряд ревакцинация взрослых животных и ежегодная прививка маралят.


Результаты практического применения вакцины из штамма 82 свидетельствуют, что отдельные животные, иммунизированные будучи молодняком (телята), реагируют в РСК спустя 2 и более лет, однако исследования таких маралов


16


подтвердили их безопасность в эпизоотологическом отношении (Третяк Н.Т., 1990, 1996). По данным В.Г. Луницына (1998, 2004), иммунизированные маралы могут быть серопозитивны как в РСК, так и в РА спустя 12-18 месяцев, 5 и более лет, что затрудняет диагностику болезни.


1.2. Роль специфической профилактики в системе противобруцеллёзных мероприятий у животных


В системе мероприятий, направленных на профилактику и ликвидацию бруцеллёза сельскохозяйственных животных особое место принадлежит специфической профилактике, поскольку применяющиеся в ветеринарной практике официальные методы массовой диагностики ещё далеко не совершенны. Они не позволяют оперативно и в полной мере выявлять животных — бактерионосителей. Выявление больных животных по ответным иммунологическим реакциям не обеспечивает должную эффективность диагностики, поскольку являясь бруцеллоносителями в течение довольно длительного инкубационного периода (от нескольких недель до 2 месяцев), они остаются не распознанными в стаде, постоянно поддерживая в нём эпизоотический процесс в качестве явных и потенциальных источников инфекции (Косилов И.А. с соавт., 1999).


Необходимость использования специфических средств защиты особо возрастает из-за реструктуризации в животноводстве: расформирование и перегруппировка ферм, создание частных фермерских хозяйств, расширение и увеличение крестьянских подворий, что привело не только к росту заболеваемости, но и появлению неблагополучных пунктов (Димов С.К., 1989; Аракелян П.К., 1997; Авилов В.М., 1997; Куренская Н.И., 1998; Косилов И.А., 1999; Касымов Т.К., 2002).


До 1931 г. в СССР не было узаконенных правил по борьбе с бруцеллезом, и только с 1932 г. они стали официально регламентированы.


17


Уже тогда П.Ф. Здродовский (1953) и С.Н. Вышелесский (1955) подчеркивали, что отсутствие средств иммунопрофилактики существенно затрудняет борьбу с бруцеллезом животных, и что по этой причине ликвидация его в ближайшее время невозможна.


Не случайно на 34 пленуме сессии ВАСХНИЛ было подчеркнуто: «Опыт оздоровления хозяйств от бруцеллеза показал, что в некоторых оздоровленных хозяйствах, даже при условии замены больного поголовья здоровым, бруцеллёз вскоре регистрируется снова. В хозяйствах с данной инфекцией и высоким процентом животных (свыше 15), дающих положительные реакции на бруцеллёз, борьба с болезнью не может ограничиваться только диагностическим контролем и устранением положительно реагирующих животных. Здесь обязательны предохранительные прививки» (Вышелесский С.Н., 1955, 1977).


Этого мнения придерживались и продолжают придерживаться многие отечественные и зарубежные исследователи (Юсковец М.К., 1960; Бойко А.А., 1967; Вертелецкий Л.Л., 1967; Вершилова П.А., 1970; Орлов Е.С., 1971; Попов А.И., 1971; Триленко П.А., 1976; Черемисин Г.Г., 1980; Падалица А. Г., 1983; Исхаков О.В., 1986; Новицкий А.А., 1989; Султанов А.А., 1991; Никифоров И.П., 1996; Касымов Т.К., 2002; Berthelon М., 1962; Geborieau R., 1970; Alton G.G., 1983, 1984).


Важно при этом отметить, что комитет МЭБ, осуществляющий контроль за разработкой и внедрением системы контроля эпизоотического процесса бруцеллеза на международном уровне, в мае 1931 г. в одном из своих постановлений отмечал, что вакцинация — это «переходная мера на более или менее длительный срок в планах систематического оздоровления восприимчивых животных от бруцеллеза, где в конечном результате возврат к применению одних только методов санитарной профилактики явился бы признанием завершения кампании по борьбе и лучшей гарантией для сохранения полученных результатов» (Виттоз Р., 1967).

Список литературы